Leucémie aiguë promyélocytaire
Informations Générales
Définition
Sous-type particulier de leucémie aiguë myéloïde avec translocation t(15;17) PML::RARA
Historiquement : pronostic catastrophique avec hémorragies fatales
Actuellement : meilleur pronostic de toutes les LAM avec taux de guérison > 90%
Urgence hématologique absolue : CIVD quasi-constante mettant en jeu le pronostic vital
Physiopathologie
Translocation t(15;17)(q24;q21) dans 93-95% des cas
Fusion entre le gène PML du chromosome 15 (leucémie promyélocytaire) avec le gène RARA du chromosome 17 codant pour le récepteur de l’acide rétinoïque alpha
Dans une minorité des cas ( < 1%) Translocations variantes, rares : ZBTB16::RARA, NPM1::RARA, NUMA1::RARA
Protéine de fusion PML::RARA pathogène :
Blocage de différenciation au stade promyélocyte
Accumulation de blastes promyélocytaires anormaux hypergranuleux
Anomalies chromosomiques et moléculaires additionnelles (35% des patients) : trisomie 8, del7q, mutations des chromosomes 1, 3, 9, 7, 11, 20 et 17, mutation FLT3
Libération massive de substances procoagulantes par les promyélocytes :
Expression anormale du facteur tissulaire (FT) et sécrétion de facteurs procoagulants par les cellules promyélocytaires
Fixation du fibrinogène sur le CD44 des blastes aggravant la CIVD
Expression de facteurs pro fibrinolytiques et inhibition des systèmes anti-fibrinolytiques
Secondaire (5-7%) : post-chimiothérapie ou post-radiothérapie
Épidémiologie
Représente 10% des LAM, incidence ≈ 1/1 000 000 en Europe
Âge médian au diagnostic : 40-50 ans (plus jeune que les autres LAM)
Clinique
Présentation Clinique
CIVD clinique :
Syndrome hémorragique majeur (quasi-constant) :
Purpura extensif, ecchymoses, épistaxis, gingivorragies, métrorragies, hématurie
Hémorragies viscérales : cérébro méningées (principale cause de décès précoce), digestives, pulmonaires
CIVD cliniquement évidente dans >80% des cas
Manifestations thrombotiques :
TVP avec risque d’Embolie pulmonaire
Thrombose profonde et viscérale : Splanchnique, rénale, pulmonaire, cérébrale
Purpura nécrotique, gangrène des extrémités
Signes généraux : fièvre, perte de poids, sueurs nocturnes
Syndrome anémique : asthénie intense, dyspnée, pâleur
Syndrome infectieux : rare au diagnostic (tableau hémorragique plus rapide que les complications infectieuses)
Syndrome tumoral rare : splénomégalie modérée (<20%), hépatomégalie discrète, pas d'adénopathies
Biologie
Anomalies de l'hémogramme
Pancytopénie fréquente : anémie, thrombopénie sévère (< 50 G/L)
Leucocytes variables : leucopénie (60%), normale (20%), hyperleucocytose (20%)
Le frottis sanguin montre des promyélocytes anormaux circulants avec corps d'Auer en fagots
Autres anomalies biologiques
Bilan d'hémostase (CIVD quasi-constante) :
Fibrinogène effondré (< 1,5 g/L, parfois < 1 g/L)
TP abaissé et TCA allongé
D-dimères très élevés
Thrombopénie majeure
Myélogramme
Myélogramme (indispensable) :
Envahissement par promyélocytes hypergranuleux (> 20% blastes)
Corps d'Auer en fagots : pathognomoniques de LAM3
Dans 20% des cas, variante microgranulaire : promyélocytes pauvres en granulations
Immunophénotypage :
CD13+, CD33+, CD64+, CD117+, CD123+, MPO
CD34-, HLA-DR, CD15-, CD65-
Expression CD56 : facteur de mauvais pronostic
Cytogénétique : translocation t(15;17)(q24;q21)
Biologie moléculaire (indispensable) :
RT-PCR : transcrit PML::RARA (confirmation diagnostique)
3 formes principales : bcr1 (Transcrit long), bcr2 (intermédiaire), bcr3 (court)
Recherche mutation FLT3-ITD
Diagnostic
Critères diagnostiques
LAM3 si :
Myélogramme : promyélocytes avec corps d'Auer en fagots, positifs à la coloration à la myéloperoxydase
Présence du transcrit PML::RARA (RT-qPCR) OU translocation t(15;17)
Immunophénotypage compatible
Diagnostics différentiels
Autres LAM : absence de t(15;17) PML::RARA, corps d'Auer isolés (non en fagots)
CIVD d'autres causes : sepsis, cancer solide, obstétrique...
Conduite à tenir
Mesures immédiates
Mesures d'urgence absolue :
Hospitalisation immédiate en hématologie avec réanimation disponible
Suspicion clinique = début traitement IMMÉDIAT avant confirmation moléculaire
Surveillance hémorragique clinique et biologique rapprochée (NFS, hémostase 2 fois/jour)
Traitement et suivi
Traitement
Urgences au diagnostic :
Leucostase :
Hydratation
Corticothérapie
Cytoréduction par hydroxyurée voire chimiothérapie en urgence
Limiter les transfusions.
Syndrome de lyse :
Lyse cellulaire avec relargage de potassium, phosphore, acide urique et de LDH, chélation du calcium, insuffisance rénale aiguë
Gestion des troubles ioniques : resikali, sevelamer, voire épuration extra-rénale
Hydratation abondante
Rasburicase
Pas de supplémentation en calcium
Neutropénie fébrile : Antibiothérapie de large spectre regroupant une bêta-lactamine associée à de la vancomycine en cas de point d’appel cutané et de l’amikacine en cas de gravité
CIVD :
Transfusion de plaquettes : Maintenir le taux > 30-50 G/L (objectif plus élevé que autres LAM)
Transfusion de plasma frais congelé : TP cible > 50%, et/ou fibrinogène > 1.5 g/L
Selon contexte et sous conditions particulières : fibrinogène, acide tranexamique, protéine C activée.
Une héparinothérapie sera discutée qu’en cas de thrombose
Traitement d'induction (obtenir RC) :
Protocole “chemo-free” ATRA + ATO (trioxyde d'arsenic) :
LAP de bas risque (GB < 10G/L)
ATRA (acide tout-trans rétinoïque) :
Induit la différenciation des promyélocytes
Risque de syndrome de différenciation (Fièvre, hypotension, prise de poids, œdèmes, épanchement) : Dexamethasone +/- arrêt temporaire de l’ATRA
Trioxyde d'arsenic (ATO, Trisenox®) :
Deuxième agent différenciant qui induit l’apoptose et dégradation de PML::RARA
Taux de RC : > 95% en 30-50 jours
Protocole ATRA + Chimiothérapie pour les LAP hyperleucocytaires :
LAP de haut risque (GB > 10G/L)
ATRA + Idarubicine puis trioxyde d’arsenic
Prophylaxie neuroméningée par méthotrexate et cytarabine
Traitement de consolidation (post-RC) :
ATRA + ATO (pour tous les patients depuis les derniers essais) :
4 cycles de consolidation d’ATO et 7 cycles de consolidation d’ATRA
Rechute :
ATRA + ATO : taux de RC2 > 80%
Autogreffe si le rattrapage a permis de négativer la MRD
Allogreffe de CSH en RC2 si donneur disponible et/ou MRD positive
Gemtuzumab ozogamicin (anti-CD33) en combinaison
Complications
Hémorragies graves (principale cause de décès précoce) :
Hémorragie cérébrale (15-20% au diagnostic si non traité)
Hémorragies digestives, pulmonaires, rétiniennes
Choc hémorragique
CIVD : quasi-constante au diagnostic (au moins biologique), amélioration rapide sous ATRA (dès J2-J5)
Syndrome de différenciation (ou syndrome ATRA) :
Signes : fièvre, dyspnée, détresse respiratoire, infiltrats pulmonaires, épanchements pleuraux/péricardiques, œdèmes périphériques, prise de poids, insuffisance rénale, hypotension
Mécanisme : libération de cytokines lors de la différenciation des promyélocytes
Traitement : dexaméthasone 10 mg IV x2/j immédiatement, arrêt temporaire ATRA/ATO si forme sévère, déplétion par lasilix
Prévention : dexaméthasone prophylactique si hyperleucocytose > 10 G/L
Toxicité cardiaque de l'ATO :
Allongement QT, torsades de pointes, troubles du rythme
Surveillance ECG régulière (avant traitement, 2 fois/semaine)
Correction de l’hypokaliémie, de l’hypomagnésémie
Syndrome de lyse tumorale : rare (hyperleucocytose élevée)
Infections : moins fréquentes que autres LAM (neutropénie modérée)
Rechute (5-10%) : moléculaire puis hématologique, traitement ATRA + ATO efficace en RC2
Suivi
Pendant traitement d'induction :
NFS, hémostase complète (TP, fibrinogène, D-dimères) : 2 à 3 fois/jour initialement
Surveillance hémorragique clinique rapprochée
ECG 2 fois/semaine (toxicité ATO : allongement QT)
Myélogramme à J30-40 : évaluation RC
Pendant consolidation :
NFS hebdomadaire
ECG régulier pendant les cures d’ATO
Surveillance clinique (syndrome de différenciation)
Après fin de traitement :
Bas risque : MRD non nécessaire
Haut risque : MRD sur moelle tous les 3 mois pendant 3 ans
Dans les deux premières années : suivi tous les 3 mois avec consultation, NFS et MRD si haut risque
Retrait de la chambre implantable à la fin des deux premières années de suivi
Après 5 ans, le suivi est annuel
MRD positive (2 prélèvements successifs) = rechute moléculaire → reprise traitement
Signes d'alerte : syndrome hémorragique, dyspnée, fièvre persistante, signes neurologiques
Évolution
L'évolution de la leucémie aiguë promyélocytaire sans traitement est très péjorative à court terme, justifiant un début de la prise en charge en urgence.
Pronostic
Avec traitement ATRA + ATO :
Taux de RC : > 95%
Survie globale à 5 ans : 90-95%
Survie sans rechute à 5 ans : > 90%
Taux de rechute : 5-10%
Facteurs pronostiques favorables :
Risque faible selon Sanz (leucocytes ≤ 10 G/L, plaquettes > 40 G/L)
Absence de mutation FLT3-ITD
CD56 négatif
Négativation moléculaire rapide (< 3 mois)
Facteurs de mauvais pronostic :
Hyperleucocytose > 10 G/L
Mutation FLT3-ITD
Expression CD56
Âge > 60 ans
MRD positive persistante
Maladie résiduelle moléculaire (MRD) :
Surveillance obligatoire par RT-qPCR du transcrit PML::RARA (MDR) en cas de haut risque
Rythme : tous les 3 mois pendant 3 ans
MRD positive = rechute moléculaire → traitement préemptif
Références
1.
Burnett AK, Russell NH, Hills RK, Bowen D, Kell J, Knapper S, et al. Arsenic trioxide and all-trans retinoic acid treatment for acute promyelocytic leukaemia in all risk groups (AML17): results of a randomised, controlled, phase 3 trial. Lancet Oncol. oct 2015;16(13):1295‑305. doi:10.1016/S1470-2045(15)00193-X PubMed PMID: 26384238.
2.
Etude APOLLO : étude randomisée de phase 3 visant à comparer un traitement à base de trioxyde d’arsenic, d’acide tout-trans rétinoïque et d’idarubi... [Internet]. [cité 15 mai 2026]. Disponible sur: https://www.cancer.fr/personnes-malades/registre-des-essais-cliniques/etude-apollo-etude-randomisee-de-phase-3-visant-a-comparer-un-traitement-a-base-de-trioxyde-d-arsenic-d-acide-tout-trans-retinoique-et-d-idarubi
3.
Haematolymphoid Tumours Part A. 5th Edition. 2024. (WHO Classification of Tumours).
4.
Leucémies aiguës myeloïdes | HEMATOCELL [Internet]. [cité 7 mai 2026]. Disponible sur: https://www.hematocell.fr/leucemies-aigues-myeloides-et-syndromes-myelodysplasiques/leucemies-aigues-myeloides
5.
Sanz MA, Fenaux P, Tallman MS, Estey EH, Löwenberg B, Naoe T, et al. Management of acute promyelocytic leukemia: updated recommendations from an expert panel of the European LeukemiaNet. Blood. 11 avr 2019;133(15):1630‑43. doi:10.1182/blood-2019-01-894980 PubMed PMID: 30803991; PubMed Central PMCID: PMC6509567.
6.
Russell N. Modern treatment of acute promyelocytic leukemia. Haematologica. 1 févr 2026;111(2):437‑8. doi:10.3324/haematol.2025.289382
7.
Russell N. Modern treatment of acute promyelocytic leukemia. Haematologica. 1 févr 2026;111(2):437‑8. doi:10.3324/haematol.2025.289382
